云序用户文章|Nature子刊揭示LncRNA发生m5C异常修饰或成肝癌诊断新靶点-技术前沿-资讯-生物在线

云序用户文章|Nature子刊揭示LncRNA发生m5C异常修饰或成肝癌诊断新靶点

作者：上海云序生物科技有限公司 2021-01-12T16:48 (访问量:4046)

前言：
近年来，异常RNA修饰与肿瘤发生的关系引起了广泛关注。作为一种广泛存在的修饰，DNA和RNA中的5-甲基胞嘧啶(m5C)已被发现数十年。DNA m5C修饰在肿瘤发生中的作用已被广泛研究。然而，关于RNA m5C修饰在肿瘤发生中的作用知之甚少。NSUN2是哺乳动物中主要的m5C修饰甲基转移酶之一，在RNA代谢过程中起重要作用。近期，云序客户在一项研究中通过云序提供的转录组测序结合m5C-Bis-Seq测序的方法，首次发现H19 LncRNA是NSUN2 RNA甲基修饰酶的特异靶点。该结果帮助我们更深的理解RNA生物学和人类疾病中m5C RNA甲基化的功能，同时可为肝癌的诊断和治疗提供潜在的靶点和生物标志物。

发表期刊：Oncogene
影响因子：8
研究方法：m5C-Bis-Seq测序，全转录组测序，RNA pull down+质谱分析，蛋白免疫沉淀
文章链接：Aberrant NSUN2-mediated m5C modification of H19 LncRNA is associated with poor differentiation of hepatocellular carcinoma
研究内容：
（1）NSUN2缺失细胞构建和NSUN2功能研究
为了探讨NSUN2在肝细胞癌（HepG2）中的功能作用，首先通过基因敲除构建NSUN2缺失的HepG2细胞，以此与野生肝癌细胞对比。通过RT-qPCR和western blot等反应评估得出，细胞超过90%的NSUN2的基因表达受到抑制，证明缺失株构建成功。
体外生长试验也发现NSUN2基因缺失细胞生存力和细胞克隆能力显著降低；用流式细胞仪分析细胞周期分布发现与野生型细胞相比，NSUN2缺陷型肝癌细胞少量处在G1和S期，更多处于G2和M期，说明缺失NSUN2基因HepG2细胞增殖与分裂受到抑制。

图1

进一步采用伤口愈合试验和Trans-well侵袭试验发现NSUS 2基因缺失导致细胞迁移和增殖能力受限。用肝癌细胞接种裸鼠也发现，接种NSUS 2缺失细胞形成的肿瘤明显小于接种野生型肝癌细胞形成的肿瘤。这些结果与体外结果一致，进一步证实了NSUN2在肝癌细胞的致瘤性中起重要作用。

图2

（2）NSUN2基因缺失细胞RNA表达和m5C修饰表达谱
基于NSUN2缺失后细胞表型的改变，为进一步探索其分子层面的变化，对野生型HepG2和NSUN2缺陷型HepG2进行转录组测序和m5C-Bis-Seq测序。RNA-Seq测序结果分析发现2681个差异表达基因，富集途径大多数与致癌作用有关，包括癌症过程、Rap1信号途径、PI3K-Akt信号途径、癌症中的蛋白聚糖和TGF-β信号途径(图3c)。m5C-Bis-Seq总共鉴定出1208个基因中11788个m5C候选位点在HepG2和NSUN2缺失细胞之间有差异甲基化。KEGG富集分析显示这些DMGs在20种途径中富集，包括剪接体、癌症中的蛋白聚糖、细胞周期、雌激素信号通路等（图3e）。RNA-Seq与m5C-Bis-Seq比较分析后得出，NSUN2缺失，导致包括H19 LncRNA在内的52个lncRNA在m5C甲基化和lncRNA表达方面都有显著变化。

图3

（3）H19 LncRNA是NSUN2的底物
NSUN2缺失后，RT-qPCR验证发现H19的表达下调了至少80%，H19特异性引物的Bisulfite-PCR检测发现H19 RNA C986位点甲基化完全丧失。而NSUN2的重新表达在一定程度上恢复了H19 LncRNA在NSUN2缺陷型肝癌细胞中的表达和甲基化。

图4

（4）m5C修饰影响H19 RNA的半衰期与稳定性
为进一步验证NSUN2介导H19 LncRNA甲基化是否会影响H19 LncRNA表达水平。研究者使肝癌细胞接受ActD 处理，然后进行RT-qPCR分析H19 RNA半衰期。如图5a所示，H19 RNA的半衰期在NSUN2缺失后显著缩短。此外，在NSUN2缺陷的HepG2细胞中，NSUN2的重新表达在一定程度上恢复了H19 RNA的半衰期(图5b)。与此同时阴性对照显示NSUN2的缺失或重新表达不影响ACT-B基因的半衰期。
此外，m5C位点在调节H19稳定性是使用荧光素酶报告分析来验证的，该分析通过构建含有野生型H19基因片段（H19-Wt）和具有突变m5C位点H19基因片段（H19Mut）的细胞来实现的。不出所料，m5C位点突变显著抑制正常肝癌细胞的荧光素酶活性，但不抑制NSUN2缺陷肝癌细胞的荧光素酶活性(图5c)。H19-Wt的荧光素酶活性在正常HepG2细胞中显著高于NSUN2缺陷型HepG2细胞。因此，这些结果表明NSUN2介导的RNA甲基化可能使H19 LncRNA稳定。
（5）H19表达和m5C修饰与HCC分化有关
接下来，作者测定了55名HCC患者的HCC组织及其癌旁正常组织中H19 RNA的表达和甲基化水平。与癌旁组织相比，H19在HCC组织中的表达显著增加，H19 C986位点的甲基化水平明显升高，此外，H19 RNA水平与其在这些组织中的RNA甲基化水平显著相关(p< 0.01，r= 0.511)(图5f)。
然而在HCC组织和癌旁组织之间，NSUN2 mRNA水平没有显著变化组织(图5g)。当与H19 C986甲基化水平差异超过10%的组织进行比较时，HCC组织中的NSUN2 mRNA水平显著高于癌旁组织(图5h)。表明NSUN2介导的H19 LncRNA的m5C异常修饰与肿瘤分化程度相关。综上所述，我们的发现表明H19的RNA甲基化水平在HCC增加，并与其表达呈正相关，这与恶性HCC病显著相关。

图5

（6）NSUN2介导m5C修饰的H19 LncRNA与癌蛋白G3BP1相互作用
XIST和HOTAIR LncRNAs m5C修饰被证明能调节它们与PRC2的相互作用。
因此，作者猜测m5C修饰的H19 LncRNA可能调节其与其他蛋白质的相互作用。通过使用RNA pulldown-MS技术（云序可提供），分离鉴定到与H19 LncRNA结合蛋白G3BP1。由H19 RNA探针下拉的G3BP1在野生型HepG2细胞中可检测到，但在NSUS 2缺陷型HepG2细胞中检测不到，同时，在野生型HepG2细胞和NSUS 2缺陷型HepG2细胞之间的G3BP1蛋白水平没有显著变化(图6b)，表明H19 RNA和G3BP1蛋白之间的相互作用可能受到NSUS 2的影响。使用G3BP1抗体的RNA结合蛋白免疫沉淀RIP-PCR（云序可提供）证实了这一概念(图6c)。G3BP1在野生型HepG2细胞中特异性结合H19 LncRNA，而在NSUS 2缺陷型HepG2细胞中不结合，这一事实表明H19 LncRNA与G3BP1蛋白的相互作用可能依赖于NSUS 2介导的RNA甲基化。用纯化的重组人G3BP1蛋白和H19 RNA探针进行了进一步的rEMSA实验。结果显示G3BP1重组蛋白优先结合m5C修饰的寡核苷酸(图6d)，表明G3BP1蛋白和H19 RNA结合受m5C修饰调控。

图6

点评：
文章通过m5C-Bis-Seq结合全转录组测序技术（云序提供），通过对测序结果比对分析筛选到差异的m5C修饰的差异RNA，该方法的优点是两个测序结果取交集缩小差异范围，明确科研检测目标。另外m5C-MeRIP结合RNA pull down实验（云序可提供），正反向验证与RNA特异性结合的蛋白，对深度挖掘不同分子的RNA修饰机制提供可靠的依据。

云序m5C RNA修饰课题技术服务五大模块:
m5C RNA修饰测序
MeRIP-seq
通过使用m5C抗体富集高甲基化的RN**段，然后结合高通量测序，在全转录组范围内研究发生甲基化的RNA区域
Bis-seq
通过重亚硫酸盐处理，使未甲基化的C发生转变，再结合高通量测序，可得到单碱基分辨率的m5C修饰位点
m5C RNA修饰靶基因验证
MeRIP-qPCR
云序提供m5C的MeRIP-qPCR服务，可针对mRNA，lncRNA，环状RNA等不同类型的RNA分子进行检测，低通量验证m5C修饰靶基因表达水平。
机制互作研究
RIP-seq/qPCR
筛选或验证m5C修饰直接靶点，研究m5C修饰靶基因的调控机制。
RNA pull down -MS/WB
筛选或验证目标RNA互作基因或蛋白，研究相应的分子调控机制。
双荧光素酶实验
验证两基因互作，研究相应的分子调控机制。
RNA修饰上游酶的筛选
RNA修饰相关酶PCR芯片
寻找上游直接调控m5C甲基化的甲基转移酶。
检测整体m5C RNA修饰水平
LC-MS/MS检测整体RNA修饰水平
精准高效，可以实现一次检测，9类修饰水平检测，一步到位。

相关产品：
m6A RNA甲基化测序